INDUÇÃO DE CALOS EM EXPLANTES FOLIARES, NODAIS E ENTRENODAIS DE Capsicum chinense JACQ. CULTIVAR “GUARACI CUMARI DO PARÁ”
Resumo
Capsicum chinense cv. Guaraci Cumari do Pará é uma pimenteira da família Solanaceae que tem sido estudada devido à presença de capsaicinóides típicos do gênero, com atividade antioxidante, antimutagênica e anticarcinogênica. O objetivo deste trabalho foi desenvolver um protocolo de indução de calos em explantes foliares, nodais e entrenodais de Capsicum chinense cv. Guaraci Cumari do Pará, visando posteriormente ao estabelecimento de células em suspensão para a produção in vitro de metabólitos secundários. Foram utilizados segmentos foliares (1 cm2), nodais (0,5 cm) e entrenodais (0,5 cm) de plântulas estabelecidas in vitro, os quais foram individualmente inoculados em tubos de ensaio contendo meio MS suplementado com 30,0 g L–1 de sacarose, 6.0 g L–1 de ágar acrescido de combinações fatoriais dos reguladores de crescimento 2,4-D (0,0; 1,0; 2,0 e 4,0 mg L-1) e BAP (0,0; 0,1; 0,5 e 2,5 mg L-1). O experimento foi avaliado semanalmente durante 49 dias quanto à indução de calos, porcentagem de área do explante coberta por células de calo (AECC) e a ocorrência de necrose. A concentração de 4,0 mg L-1 de 2,4-D provocou necrose nos explantes nodais e entrenodais. A combinação de 1,0 mg L-1 2,4-D e 2,5 mg L-1 BAP resultou em 100% indução de calos em explantes foliares, o qual apresentou 77% de AECC, e a concentração de 2 mg L-1 2,4-D resultou em 100% de indução para segmentos nodais e entrenodais, com 100% de AECC.
Referências
DE, A. K. Capsicum: The genus Capsicum. Taylor & Francis, Londres, 2003.
RIZWAN, M.; SHARMA, R.; SONI,P.; GUPTA, N. K.; SINGH,G. Regeneration protocol for chilli (Capsicum annuum L.) variety Mathania. Jornal of Cell and Tissue Research, v.13, n.1, p.3513-3517, 2013.
RUIZ-LAU, N., MEDINA-LARA, F., MINERO-GARCIA, Y., ZAMUDIO-MORENO, E., GUZMÁN-ANTONIO, A., ECHEVARRÍA-MACHADO, I., MARTÍNEZ-ESTÉVEZ, M. Water deficit affects the acumulation of capsaicinoids in fruits of Capsicum chinense Jacq. HortSciense, v.46, n.3, p.487-492, 2011.
EMBRAPA. Sistema de produção: Pimenta Capsicum. Disponível em <http://sistemasdeproducao.cnptia.embrapa.br/FontesHTML/Pimenta/Pimenta_capsicum_spp/importanciaeconomica.html>, [acesso em 5 de mai 2015].
VOTAVA, E. J.; BOSLAND, P.W. NuMex Suave Red and NuMex Suave Orange Mild Capsicum chinense cultivars. Hortsciense, v.16, n.3, p.760-764, 2014
ANTONIOUS, G. F.; BERKE, T.; JARRET, R. L. Pungency in Capsicum chinense: Variation among countries of origin. Journal of Environmental Science and Health, v.44, n.2, p.179-184, 2009.
KAZEM, M. G. T.; EL-SHEREIF, S. A. E. H. N. Toxic effect of Capsicum and Garlic xylene extracts in toxicity of boiled linseed oil formulations against some piercing sucking cotton pests. American-Eurasian Journal of Agricultural & Environmental Sciences, v.8, n.4, p.390-396, 2010.
MADHUMATHY, A. P.; AIVAZI, A.; VIJAYAN, V. A. Larvicidal efficacy of Capsicum annuum against Anopheles stephensi and Culex quinquefasciatus. Jornal of Vector Borne Diseases, Índia, v.44, n.1, p.223-226, 2007.
RAMACHANDRA, R.; RAVISHANKAR, G. A. Plant cell cultures: Chemical factories of secondary metabolites. Biotechnology Advances, v.20, n.1, p.101-153, 2002.
CHATTOPADHYAY, S.; FARKYA, S.; SRIVASTAVA, A. S.; BISARIA, V. S. Bioprocess considerations for production of secondary metabolites by plant cell suspension cultures. Biotechnology and Bioprocess Engineering, v.7, n.3, p.138-149, 2007.
MURASHIGE, T.; SKOOG, F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, v.15, p.473-497, 1962.
CERQUEIRA, E. S.; PINTO, J.E.B.P.; MORAIS, A.R.; CASTRO, N.E.A.; CARDOSO, M.G.; LAMEIRA, O.A. Indução de calos em erva-de-touro (Tridax procumbens L.) utilizando diferentes reguladores de crescimento e tipos de explantes. Ciência e Agrotecnologia, v.26, n.2, p.301-308, 2002.
BARBOSA, M. H. P.; INNECO, R.; PINTO, J. E. B. P.; PINTO, C. A. B. P. Efeito de reguladores de crescimento e tipo de explantes na morfogênese in vitro de Capsicum annuum L. Ciência Rural, v. 24, n. 1, p. 67-72, 1994.
CALDAS, L.S.; HARIDASAN, P.; FERREIRA, M.E. Meios nutritivos. In: TORRES, A.C.; CALDAS, L.S.; BUSO, J.A. Cultura de Tecidos e Transformação Genética de Plantas. Brasília: EMBRAPA-CNPH/EMBRAPA-SPI, 1998.
UMAMAHESWARI, A.; LALITHA, V. In vitro effect of various growth hormones in Capsicum annuum L. on the callus induction and production of capsaicin. Jornal of Plant Scienses, v.2, n.5, p. 545-551, 2007.
RAJ, R. P.; GLINT, V. D.; BABU, N. In vitro plant regeneration in Capsicum chinenses Jacq. (Naga Chili). Jornal of Applied Biology and Biotechnology, v.3, n.1, p.30-33, 2015.
KHAN, H.; SIDDIQUE, I.; ANIS, M. In vitro organogenesis from internode derived callus culture of Capsicum annuum L. Jornal of Plant Biochemistry and Biotechnology, v.20, n.1, p.84-89, 2011.
SANTOS, M. R. A.; FERREIRA, M. G. R.; GUIMARÃES, M. C. M.; LIMA, R. A.; OLIVEIRA, C. L. L. G. Callogenesis in leaves of Kalanchoe pinnata Lam. By 2,4-d and BA action. Revista Brasileira de Plantas Medicinais, v.16, n.3, p.760-764, 2014.
SANTOS, M. R. A.; ROCHA, J. F.; PAZ, E. S.; SMOZINSKI, C. V.; NOGUEIRA, W. O.; FERREIRA, M. G. R.; GUIMARÃES. Callus induction in leaves explants of Cissus verticillatta (L.) Nicolson & C. E. Jarvis . Plant Cell Culture & Micropropagation, v.10, n.2, p.41-46, 2014.
